Identificación de rizobios en nódulos de Lupinus alopecuroides Desr. desarrolladas en las chacras de Castrovirreyna, Huancavelica

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.54942/qantuyachay.v1i1.5

Palabras clave:

rizobios, endosimbióntes, Lupinus alopecuroides, Bradyrhizobium, 16S rRNA

Resumen

Una de las leguminosas nativas de la región Puna y Janca de nuestro país es Lupinus alopecuroides Desr, esta leguminosa posee rol importante como planta pionera en colonizar espacios de suelos poco evolucionados y una vez establecida contribuye a regenerar la productividad natural de las chacras mediante la fijación biológica del N. Asimismo, los campesinos lo emplean en diversas actividades, en la salud de las personas y animales y para generar energía calorífica (leña). Dada su importancia se planteó analizar el endosimbionte de nódulos radicales de L. alopecuroides Desr desarrolladas en las chacras de Choccra Pucro (3996 m.s.n.m.), Castrovireyna, Huancavelica. Se evaluó 60 nódulos procedente de 20 plantas, se tomaron 3 nódulos por planta utilizando muestreo simple-aleatorio y se cultivaron en medio YEM. Lo que permitió obtener 30 aislados, cuando se amplificaron y secuenciaron el gen 16S rRNA se reagruparon en 14 géneros, 03 de ellos pertenecen a las rizobiaceas (Rhizobium sp., Bradyrhizobium sp. y Phyllobacterium sp.), y una vez inoculadas empleando plántulas de L. alopecuroides, el género Bradyrhizobium logró formar protuberancias de nódulos radicales. Asimismo, en los nódulos viven otros géneros no rizobianos como Erwinia, Rahnella, Serratia, Rhodococcus, Arthrobacter, Paenibacillus, Pseudomonas, Stenotrophomonas, Bacillus, Staphylococcus y Pantoea, cuya función queda por aclarar.

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Referencias

Andam, C. P., & Parker, M. A. (2007). Novel alphaproteobacterial root nodule symbiont associated with Lupinus texensis. Applied and Environmental Microbiology, 73(17), 5687–5691.

Altschul, S., Gish, W., Miller, W., Meyer E and Lipman, D. (1990). Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology 215:403-410.

Amaral-Zettler, L., Peplies, J., Ramette, A., Fuchs, B., Ludwig, W. (2008). Actas del taller internacional sobre tecnología de ARN ribosómico, 7 al 9 de abril de 2008, Bremen, Alemania. Syst y Appl Microbiol 31: 258–268.

Ardley, J. K., Parker, M. A., De Meyer, S. E., Trengove, R. D., O’Hara, G. W., Reeve, W. G., Yates, R. J., Dilworth, M. J., Willems, A., & Howieson, J. G. (2012). Microvirga lupini sp. nov., Microvirga lotononidis sp. nov. and Microvirga zambiensis sp. nov. are alphaproteobac-terial root-nodule bacteria that specifically nodulate and fix nitrogen with geographically and taxonomically separate legume hosts. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 62(11), 2579–2588.

Arone, G. J. (2012). Biodiversidad microbiana en chacras maiceras de Allpas (Acobamba, Huancavelica, Perú) cultivadas bajo el sistema tradicional andino. Agencia Consejo Superior de Investigaciones Científicas Estación Experimental del Zaidín-Granada. Editorial de la Universidad de Granada. D.L..: GR 730-2013 ISBN: 978-84-9028-412-4.

Arone, G., Calderón, C., Moreno, S., & Bedmar, E. J. (2014). Identification of Ensifer strains isolated from root nodules of Medicago hispida grown in association with Zea mays in the Quechua region of the Peruvian Andes. Biology and Fertility of Soils, 50(1), 185–190.

Barney, V. (2011). Biodiversidad y ecogeografía del género Lupinus l. (leguminosae) en Colombia.

Barrera, E. (2015). Evaluación del frijol lupinus (Lupinus mutabilis) como abono verde para la producción agroecológica en el municipio de Subachoque en Cundinamarca. Corporación universitaria minuto de Dios Facultad de ingeniería. Bogotá.

Barrera, N., García, S., Dávila, O., Martínez, E., y Rodríguez, O. (1997). Biodiversidad de Bradyrhizobium simbiontes de Lupinus e inducción de factores de nodulación. XVIII RELAR: 201-203.

Barrera, L. L., Trujillo, M. E., Goodfellow, M., Garcia, F. J., Hernandez-Lucas, I., Davila, G., van Berkum, P., Martinez-Romero, E. (1997). Biodiversity of bradyrhizobia nodulating Lupinus spp. Int. J. Syst. Bacteriol. 47: 1086–1091.

Camarena, F., Huaringa, A., Jiménez, J. y Mostacero, E. (2012). Revalorización de un cultivo subutilizado: Chocho o Tarwi (Lupinus mutabilis Sweet). Primera Edición. Lima: Universidad Nacional Agraria La Molina-Consejo Nacional de Ciencia, Tecnología e Innovación Tecnológica (CONCYTEC). 222 pp.

Chirinos-Arias, M. C., Jiménez, J. E., & Vilca-Machaca, L. S. (2015). Analysis of Genetic Variability among thirty accessions of Andean Lupin (Lupinus mutabilis Sweet) using ISSR molecular markers. Scientia Agropecuaria, 6(1), 17–30. https://doi.org/10.17268/sci. agropecu.2015.01.02

Corona, E., Munive, J., Sánchez, J., Corona, M., Salinas, F., Chávez, L., y Bermúdez, K., (2006). Identificación de bacterias fijadoras de nitrógeno en nódulos de plantas de Lupinus montanus hbk. Centro de Desarrollo de Productos Bióticos. Instituto Politécnico Nacional. Universidad Tecnológica de Tecamac. Universidad Benemérita de Puebla. Apartado Postal 24. Yautepec, Morelos. México.

Davies, C., Pan, H., Godwin, J., Gray, R., Arriagada, R., Raina, V. (2013). Long-term effects of continuing adjuvant tamoxifen to 10 years versus stopping at 5 years after diagnosis of oestrogen receptor-positive breast cancer: ATLAS, a randomised trial. Lancet 381: 805-16.

García, H. (2010). Metales Pesados, sales y sodio en suelos de Chinampa en México. Agrociencia 35:385-395.

Huamán, A., Chirinos-Arias, M., Solís, H., Sáez, G., Marocho, L., Guevara, J. (2013) Evaluación in vitro de la actividad antileishmanial y antitripanosomial del extracto acuoso de las hojas y semillas de Lupinus mutabilis Sweet “tarwi”. Anales Facultad de medicina 74(Supl 1): S19.

Huasasquiche, L. (2018). Aislamiento y caracterización de la microflora asociada al cultivo de tarwi (Lupinus mutabilis Sweet). Tesis para Optar el Título Profesional de: Biólogo. Universidad Nacional Agraria La Molina - Facultad De Ciencias. Lima, Perú.

Hughes, C., Eastwood, R. (2006). Island radiation on a continental scale: exceptional rates of plant diversification after uplift of the Andes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 103:10334–10339

Jacobsen, S. E., Mujica. A., Moraes llgaard, R. B., Kvist, L. P., Borchsenius F., y Balslev H. (2006). El tarwi (Lupinus mutabilis Sweet.) y sus parientes silvestres. En Botánica Económica de los Andes Centrales. Edit. Universidad Mayor de San Andrés, La Paz, 2006: 458-482.

Kumar, S., Stecher, G., & Tamura, K. (2016). MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 7.0 for Bigger Datasets. Molecular Biology and Evolution, 33(7), 1870–1874.

Leonard, L. T. (1943). A simple assembly for use in testing of culture of rhizobia. J. Bacteriol. 45:523-527.

Lezama, P. (2010). Las Especies de Lupinus (Fabaceae) y de sus simbiontes en el distrito de Corongo-Ancash, Altramuces Legumbres – Variedades, Universidad Nacional Mayor de San Marcos.

Paisio, C., González, P., Talano, M., y Agostini, E. (2012). Remediación biológica de Mercurio: Recientes avances. Departamento de Biología Molecular, FCEFQN, Universidad Nacional de Río Cuarto, Ruta 36 Km 601. C.P. 5800 Río Cuarto, Córdoba, Argentina. Teléfono: 54-358-4676537; Fax: 54-358-4676232.

Parker, M. A., Kennedy, D. A. (2006). Diversity and relationships of bradyrhizobia from legumes native to eastern North America. Can. J. Microbiol. 52:1148–1157.

Rigaud, J, y Puppo, A, (1975). Indole-3-acetic acid catabolism by soybean bacteroids. J. Gen. Microbiol. 88: 223-228.

Saravia, M. (2015). Control Biológico del nematodo de la papa en el Marco de la Agricultura Conservacionista. Programa Integrado de Manejo de Cuencas, disponible en promic@promic-bolivia.org.

Stepkowski, T., Moulin, L., Krzyzanska, A., McInnes, A., Law, I. J., Howieson, J. (2005). European origin of Bradyrhizobium populations infecting Lupins and Serradella in soils of Western Australia and South Africa. Appl. Environ. Microbiol. 71:7

Taco-Taype, N, y Zúñiga-Dávila, D, (2020). Efecto de la inoculación de plantas de Tarwi con cepas de Bradyrhizobium spp. aisladas de un lupino silvestre, en condiciones de invernadero. I Congreso Internacional de Biotecnología e innovación (ICBi), Revista peruana de biología número especial 27(1): 035 - 042 (marzo 2020).

Talbi, C. (2011). Nuevas estrategias para mejorar la fijación simbiótica de nitrógeno en Phaseolus vulgaris cultivada en suelos afectados por estreses abióticos. Editor: Editorial de la Universidad de Granada. D.L.: GR 1182-2012, ISBN: 978-84-695-1156-5.

Trujillo, M. E., Willems, A., Abril, A., Planchuelo, A. M., Rivas, R., Ludena, D., Mateos, P. F., Molina, E. M., y Velázquez, E. (2005). Nodulation of Lupinus albus by strains of Ochrobactrum lupini sp. Nov. Appl. Environ. Microbiol. 71: 1318-1327.

Valderrama Romero, A. S.; Valencia Sallo, C.; Villalba Quispe, H. y Abril Porras, V. (2015). La importancia del lupino en el matenimiento de la fertilidad del suelo. X Congreso de Ciencia y tecnología ESPE. Ecuador.

Valverde, A., Velazquez, E., Santos, F. F., Vizcano, N., Rivas, R., Mateos, P, F., Molina, E. M., Igual, J. M., y Willems. (2005). Phyllobacterium trifolii sp. nov., nodulating Trifolium and Lupinus in Spanish soils. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 55: 1985-1989 A.

Vincent, J. (1970). A manual for the practical study of the root nodule bacteria. International Biological Programme Handbook 15. Blackwell. Oxford.

Woese, C. R. (1987) Bacterial evolution. Microbiology and Molecular Biology Reviews 51, 221-271.

Woese, C.R. y Fox, G.E. (1977). Phylogenetic structure of the prokaryotic domain: the primary kingdoms. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 74, 5088–5090.

Descargas

Publicado

2021-11-30

Cómo citar

Identificación de rizobios en nódulos de Lupinus alopecuroides Desr. desarrolladas en las chacras de Castrovirreyna, Huancavelica. (2021). Qantu Yachay, 1(2), 36-45. https://doi.org/10.54942/qantuyachay.v1i1.5